Analyse des plaques amyloïdes dans le cerveau de souris et de rats

Q: Utilisez-vous des agents anti-fluorescence pour réduire l'autofluorescence?

Oui. Pour le cerveau et les tissus post-mortem humains, où l'autofluorescence peut masquer les cibles à faible abondance, nous utilisons systématiquement des agents extincteurs tels queTrueBlack. Ces solutions améliorent considérablement le rapport signal/bruit sans affecter l'antigénicité ou la stabilité des fluorophores.

Q: Prend-il en charge la numérisation de lames entières et les cohortes à grande échelle?

Oui. Le balayage fluorescent multicanal de la lame entière est standard. Il permet une cartographie pathologique région par région et une quantification cohérente sur de grandes cohortes, ce qui est idéal pour les essais d'efficacité précliniques et les études à doses multiples.Nos analyses entièrement automatisées s'adaptent parfaitement aux grandes études d'efficacité précliniques et aux essais à doses multiples, garantissant une reproductibilité élevée d'une expérience à l'autre.

Q: Est-il possible d'intégrer les données relatives aux biomarqueurs du LCR ou du sang aux résultats histologiques?

Oui. Nous pouvons établir une corrélation entre la charge plaque et les caractéristiques du microenvironnement avec des biomarqueurs liquides, tels que Aβ1-40, Aβ1-42, la chaîne légère du neurofilament, les panels de cytokines pro-inflammatoires, TREM2, etc.

Services CRO

Immunofluorescence multiplexe (mIF)

Histologie des plaques bêta-amyloïdes chez des modèles murins et rats de la maladie d'Alzheimer

Société internationale de recherche clinique préclinique spécialisée dans l'analyse des plaques Aβ et de la neuroinflammation associée dans des modèles animaux. Immunofluorescence multiplexe validée et analyse morphologique avancée des plaques dans le cerveau de souris et de rats.

Obtenir un devis

Biospective possède une expertise de pointe dans la fourniture de services d'histologie des plaques bêta-amyloïdes, y compris la marquage par immunofluorescence multiplexe (mIF) à l'aide de divers anticorps. Nous disposons de capacités uniques pour mesurerles caractéristiques des plaques Aβ (par exemple, nombre, taille, surface, type, morphométrie) et analyser les relations spatiales complexes avec la neuroinflammation associée, y compris les microglies activées et les astrocytes réactifs, à l'aide de notre « analyse du microenvironnement » exclusive.

Découvrez nos services :

Quels services de recherche sous contrat Biospective propose-t-il pour la marquage et l'analyse des plaques amyloïdes ?

Détection haute résolution des plaques Aβ, cartographie spatiale et profilage de la neuroinflammation pour la recherche sur la maladie d'Alzheimer.

Biospective fournit une caractérisation complète des plaques amyloïdes bêta (Aβ) et des réponses du microenvironnement glial à l'aide d'une marquage tissulaire multiplexe par immunofluorescence (mIF) avancée ,d'une imagerie haute résolutionde lames entières etd'une analyse morphologique automatisée basée sur l'apprentissage automatique.

Marquage fluorescente au pFTAA des plaques amyloïdes dans le cortexcérébral de souris APP/PS1.

Notre plateforme permet une analyse quantitative et multiparamétrique de la pathologie amyloïde bêta ainsi que des phénotypes microgliaux et astrocytaires, en intégrant des mesures biologiques à résolution spatiale afin de fournir des évaluations sensibles et complètes de l'efficacité thérapeutique, au-delà des mesures conventionnelles de la charge plaque.

Nos capacités en matière de marquage et d'analyse des plaques amyloïdes

Détection et quantification des plaques amyloïdes

Détection des amyloïdes fibrillaires à l'aide d'un anticorps OC amyloïde fibrillaire optimisé ( quantification optionnelle des colorants pan-Aβ / Aβ40 / Aβ42 / Aβ43, 4G8, 6E10, pFTAA ).
Mesures des plaques : nombre, surface, distribution par taille et mesures morphologiques ( par exemple, circularité).

Profilage avancé du microenvironnement des plaques

Quantification de la densité des marqueurs pertinents, tels que les microglies/Iba1 et les astrocytes/GFAP, à la fois globalement et dans le microenvironnement des plaques en fonction de la distance par rapport à la plaque.
Détection et classification morphologique des microglies et des astrocytes. Le nombre de cellules gliales de morphologie spécifique peut être mesuré à la fois globalement et localement à différentes distances des plaques amyloïdes individuelles.
Mesures de l'interaction entre les microglies et les astrocytes, telles que le rapport entre les microglies et les astrocytes dans l'environnement de la plaque.

Imagerie de lames entières et analyse spatiale

Imagerie par fluorescence multicanaux haute résolution de la lame entière.
Segmentation neuroanatomique automatisée du cerveau — toutes les mesures sont calculées dans chaque région d'intérêt (ROI) du cerveau, telle que l'hippocampe, l'amygdale, le cortex entorhinal, etc.

Intégration translationnelle

Quantification précise du volume cérébral et mesure de l'épaisseur corticale à l'aide d'une IRMin vivo.
Évaluations cognitives et du sommeil
Biomarqueurs liquides provenant du LCR/sang et des homogénats de tissu cérébral
- Aβ40 et Aβ42
- Cytokines (par exemple IL-1β, TNF-α)
- Chaîne légère du neurofilament (NfL)
- TREM2

Exemple demontage d'une plaque Aβ à partir de coupes de tissu cérébral provenant d'une souris transgénique APP/PS1 qui ontsubi une marquage automatisée et une analyse d'image à l'aide des processus développés par Biospective.

Types de tissus et modèles de maladies

Espèces

Modèles de rongeurs transgéniques, notamment les modèles APP/PS1, 5xFAD, Tg2576 et APP KI

Formats tissulaires

Coupes FFPE: haut débit, stables
Coupes fixes congelées: idéales pour les marqueurs inflammatoires difficiles à détecter

Applications

Études d'efficacité thérapeutique
Modélisation mécanistique de la neuroinflammation associée à la plaque

Quel est le processus de Biospective pour la marquage et l'analyse quantitative des plaques amyloïdes bêta ?

Des protocoles bien établis pour la préparation des échantillons cérébraux, la marquage, la numérisation des lames et l'analyse quantitative des images.

Notre processus de marquage et d'analyse des plaques Aβ

Chez Biospective, nous avons mis en place un processus standardisé et hautement reproductible en plusieurs étapes pour la marquage et l'analyse des plaques amyloïdes bêta provenant de cerveaux fixés au formol :

Préparation des échantillons
- Microtomie ou cryosection de haute précision de cerveaux FFPE ou fixés et congelés.
- Protocoles de récupération d'antigènes personnalisés optimisés pour l'OC et chaque anticorps spécifique à une isoforme Aβ, garantissant une liaison à haute affinité et la préservation de la morphologie des plaques. Les conditions de récupération sont encore personnalisées pour tout anticorps supplémentaire inclus dans le panel multiplex. Nous effectuons régulièrement une récupération à l'acide formique, une récupération induite par la chaleur (HIER), une récupération enzymatique ou une combinaison de ces méthodes.
- Contrôle qualité (CQ) rigoureux de la qualité et de la spécificité de la marquage ainsi que de l'intégrité des tissus.
Marquage (IHC ou IF multiplex)
- Marqueurs amyloïdes
  - Amyloïde fibrillaire OC (marqueur primaire par défaut)
  - Pan-Aβ, Aβ 1–40, 1–42, 1–43, 6E10, 4G8 et MAOB-2 (ou anticorps amyloïde personnalisé)
  - Colorant pFTAA
- Marqueurs du microenvironnement
  - Iba1 (microglies)
  - GFAP (astrocytes)
  - TREM2, LAMP1, CD68, NeuN, APP et/ou marqueurs personnalisés
  - DAPI (noyaux)
- Avantages du multiplexage
  - Le multiplexage permet une analyse spécifique au type de cellule du microenvironnement sur une seule lame, caractérisant avec précision le paysage cellulaire entourant les plaques individuelles.
Imagerie
- Balayage fluorescent multicanal de la section entière
d'analyse quantitativeNous avons développé une analyse quantitative entièrement automatisée pour l'immunofluorescence multiplexe, comprenant la segmentation et le comptage des plaques amyloïdes bêta, l'analyse morphologique des cellules gliales et l'analyse du microenvironnement.

Illustration du processus de Biospective consistant à prélever des échantillons de tissu cérébral sur des modèles animaux, à réaliser des coupes tissulaires, un marquage immunofluorescent multiplex, un balayage complet des lames et une analyse quantitative des images.

Directives relatives au prélèvement, à la préparation et à l'expédition des échantillons

Nous fournissons une assistance complète afin de garantir l'intégrité des échantillons et la fiabilité des données :

Collecte des échantillons : les animaux doivent être perfusés avec du PBS froid et/ou du formol tamponné neutre à 10 %, et les cerveaux doivent être soigneusement extraits.
Préparation des échantillons : les cerveaux doivent être fixés brièvement et correctement dans du formol tamponné neutre à 10 %. 
Expédition des échantillons : les échantillons doivent être expédiés dans du PBS avec de l'azide de sodium.

Pourquoi quantifier les plaques amyloïdes bêta ?

Brève présentation de la pathologie Aβ dans la maladie d'Alzheimer et importance d'une analyse quantitative fiable.

Les plaques amyloïdes sont des dépôts extracellulaires de peptides Aβ agrégés et constituent une caractéristique neuropathologique de la maladie d'Alzheimer(Selkoe, 2016). Les peptides Aβ sont générés par le clivage de la protéine précurseur amyloïde (APP)et peuvent avoir différentes longueurs, les plus courants dans la MAétant les Aβ40 et Aβ42. L'accumulation de plaques Aβ dans le cerveau suit un schéma spatio-temporel distinct , avec une première apparition dans lenéocortex, suivie d'une propagation dans les régions sous-corticales, y compris l'hippocampe(Braak, 1991; Braak, 2006).

Modèle spatio-temporel de la progression de la pathologie β-amyloïde (adaptéde Braak, 1991).

La quantification détaillée des plaques amyloïdes et de leur microenvironnement neuroinflammatoire associé est extrêmement précieuse :

Les premiers traitements modificateurs de la maladie approuvés pour la MA consistent en des traitements par anticorps ciblant la forme pathologique de l'Aβ, visant à éliminer les plaques amyloïdes (Perneczky, 2024).
Un microenvironnement inflammatoire est souvent observé à proximité des plaques, qui serait principalement induit par les microglies (Tsering, 2024).
Des sous-types spécifiques de microglies (microglies associées à la maladie, DAM) et d'astrocytes (astrocytes associés à la maladie, DAA) se sont avérés être enrichis dans la MA (Deczkowska, 2018; Habib, 2020). Il a été constaté que les microglies sont fortement localisées au niveau des plaques, tandis que les astrocytes se trouvent plus loin des plaques (Mallach, 2024).
Il a été constaté que les interactions entre les microglies et les astrocytes sont perturbées autour des plaques amyloïdes (Mallach, 2024).
Les microglies (Savage, 2019) et les astrocytes (Patani, 2023) subissent des changements morphologiques drastiques dans des conditions stressantes et joueraient un rôle important dans les troubles neurodégénératifs (Hulshof, 2022; Gao, 2023).

Dans cette vidéo, nous présentons notre plateforme de marquage et d'analyse des plaques amyloïdes. Elle comprend des exemples illustratifs tirés du modèle murin APP/PS1 de la maladie d'Alzheimer, démontrant comment notre immunofluorescence multiplexe et nos analyses spatiales automatisées quantifient la charge plaque, l'activation gliale et les microenvironnements des plaques afin de mesurer la progression de la maladie et de soutenir l'évaluation thérapeutique dans les études précliniques.

Transcription de la vidéo

Les plaques amyloïdes, dépôts extracellulaires de bêta-amyloïde, et leur niche neuroinflammatoire associée constituent une signature neuropathologique caractéristique de la maladie d'Alzheimer. La charge plaque montre une progression spatio-temporelle indicative du stade de la maladie et les plaques amyloïdes sont une cible thérapeutique majeure dans la maladie d'Alzheimer.

L'immunofluorescence multiplexe permet la détection spatiale multi-marqueurs des plaques amyloïdes et de leur microenvironnement glial au sein de l'architecture cérébrale intacte sur une seule coupe. Les cerveaux de souris sont prélevés, fixés, traités, puis sectionnés avec précision et montés sur des lames de verre.

Une coupe cérébrale par immunofluorescence multiplexe d'une souris APP/PS1 montre des plaques entourées d'une niche inflammatoire définie par des microglies activées positives à l'IBA-one et des astrocytes réactifs positifs au GFAP.

À partir d'images multiplexes de lames entières, notre pipeline automatisé quantifie la densité du signal par canal, segmente les plaques et les cellules gliales, stratifie les plaques en fonction de leur taille et calcule les mesures d'activation microgliale et astrocytaire à partir de la morphologie cellulaire. Le profilage du microenvironnement des plaques mesure ensuite ces caractéristiques en fonction de la distance par rapport à chaque plaque et agrège les résultats par région neuroanatomique et par sujet pour l'analyse statistique.

Le modèle APP/PS1 développe une amyloïdose robuste dépendante de l'âge avec une propagation régionale à travers le cortex et l'hippocampe. Les plaques apparaissent vers 3 mois, la microgliose vers 4 mois, suivies de l'angiopathie amyloïde cérébrale et des phénotypes neurodégénératifs à des stades plus avancés.

Afin de démontrer l'efficacité de notre plateforme d'analyse des plaques, nous avons profilé des souris A-P-P PS1 âgées de 6, 9 et 12 mois par rapport à des témoins. La densité des plaques a augmenté localement à 6 mois, par exemple dans le cortex antérieur, a fortement augmenté à 9 mois et n'a montré qu'une légère augmentation non significative à 12 mois.

En mesurant les paramètres individuels des plaques, tels que leur taille, nous avons quantifié la progression de la distribution de la taille des plaques au fil du temps.

La microgliose et l'astrogliose dans ce modèle suivent la progression spatio-temporelle des plaques amyloïdes et peuvent être quantifiées avec une grande sensibilité à l'aide des analyses morphologiques automatisées de Biospective.

Nous avons caractérisé le microenvironnement des plaques en quantifiant la densité des cellules en fonction de la distance par rapport aux plaques. Alors que les microglies étaient fortement concentrées en contact direct avec les plaques, les astrocytes étaient concentrés jusqu'à 50 micromètres des plaques.

À l'aide de cette analyse, nous avons développé des mesures avancées de l'environnement neuroinflammatoire des plaques, telles que le rapport microglies/astrocytes à proximité des plaques, qui était sensible au stade plus avancé de la maladie.

En résumé, notre plateforme entièrement automatisée quantifie les phénotypes gliaux et leurs relations spatiales avec les plaques, à l'aide d'un ensemble complet de mesures sensibles. Cela permet de détecter des effets plus faibles avec le même nombre d'animaux dans les études précliniques d'efficacité thérapeutique, tout en fournissant des informations supplémentaires sur les traitements ciblant l'engagement des plaques microgliales, les interactions entre les microglies et les astrocytes, et les phénotypes gliaux spécifiques.

Veuillez nous contacter à l'adresse [email protected] pour en savoir plus sur nos services de marquage et d'analyse des plaques amyloïdes.

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Comment Biospective procède-t-elle à l'analyse des plaques amyloïdes et de la neuroinflammation associée ?

Résumé de nos méthodes de quantification de l'Aβ et exemple illustratif tiré d'un modèle murin de la maladie d'Alzheimer.

Afin d'illustrer notre processus de marquage des plaques amyloïdes et d'analyse du microenvironnement, nous avons caractérisé l'accumulation progressive de la charge pathologique dans un modèle murin de la maladie d'Alzheimer présentant des dépôts amyloïdes bêta, le modèle APP/PS1 (ARTE10). Les souris ont été étudiées à l'âge de 6, 9 et 12 mois, puis comparées à des souris témoins âgées de 6 mois.

Flux de travail animé pour l'analyse du microenvironnement des plaques Aβ.

Dans cette étude, nous avons constaté :

Une augmentation progressive, très significative et par étapes de la densité des plaques amyloïdes dans les différents groupes d'âge.
Une augmentation globale de la neuroinflammation, quantifiée par la densité de marquage des microglies (Iba1) et des astrocytes (GFAP), selon un schéma spatio-temporel qui suit la pathologie amyloïde.
Des mesures avancées qui fournissent des indications plus précises sur l'état de la maladie :
- La densité des microglies activées
- Le score moyen d'hypertrophie des astrocytes
- Le rapport microglies/astrocytes à proximité des plaques
La sensibilité accrue de ces paramètres avancés signifierait que, dans le cadre d'une étude préclinique sur l'efficacité thérapeutique, un effet plus faible pourrait être détecté en utilisant le même nombre d'animaux. En outre, ces paramètres seraient particulièrement pertinents pour les traitements ciblant les microglies, les astrocytes, les interactions microglies-astrocytes ou l'interaction des cellules gliales avec les plaques amyloïdes.

Progression spatio-temporelle de l'amyloïde-β et de la pathologie gliale associée dans un modèle murin APP/PS1 de la maladie d'Alzheimer.

Présentation interactive de notre étude de recherche

Dans l'« Image interactive » ci-dessous, vous trouverez les résultats de notre analyse des plaques amyloïdes bêta et du microenvironnement inflammatoire, y compris des coupes tissulaires à haute résolution obtenues par immunofluorescence multiplexe du cerveau de souris APP/PS1 et de souris témoins.

Comment utiliser notre visionneuse interactive
Naviguez dans l'« histoire en images » à l'aide du panneau de gauche ou des flèches à l'écran. Vous pouvez faire un panoramique sur les images microscopiques haute résolution à l'aide de votre souris et zoomer/dézoomer à l'aide de la molette de défilement ou des commandes +/-. Le panneau de contrôle (en haut à droite) permet de basculer entre les canaux d'image et les superpositions de segmentation. Pour une expérience optimale, nous vous recommandons de passer en mode plein écran. Cette présentation interactive vous permet d'explorer en détail la neuropathologie du modèle et les déficits fonctionnels associés, comme si vous regardiez directement dans le microscope.

Principaux avantages des services de marquage et d'analyse des plaques amyloïdes proposés par Biospective :

Détection OChautement sensible des amyloïdes fibrillaires
Analyse optionnelle des isoformes pan-Aβ, Aβ40, Aβ42 et Aβ43
Marquage personnalisée par anticorps/marqueur
Imagerie automatisée à haut débit de lames entières et analyse des régions neuroanatomiques
Caractérisation et quantification des plaques amyloïdes
Analyse de la morphologie et du phénotype des cellules gliales
Mesures avancées de la neuroinflammation et de l'environnement des plaques — très sensibles aux petits changements dans la progression de la maladie
Compatibilité interespèces (souris, rat)
Services complémentaires (par exemple, biomarqueurs liquides mesurés par immunoessais)

Sélection de mesures de l'environnement des plaques amyloïdes fournies par la plateforme Biospective

Indicateur	Unités	Description
Densité des plaques amyloïdes	Nombre par mm²	Densité des plaques amyloïdes dans chaque région d'intérêt anatomique
Densité de marquage	Fraction	Fraction de pixels positifs pour chaque marquage utilisée dans l'IF ou l'IHC multiplex
Densité des microglies activées	Nombre par mm²	Densité des microglies classées comme ayant une morphologie non ramifiée
Score moyen d'hypertrophie des astrocytes	Score morphologique	Score morphologique moyen des astrocytes détectés dans une région d'intérêt
Densité des cellules gliales dans le microenvironnement de la plaque	Nombre par mm²	Densité des microglies ou des astrocytes dans le microenvironnement de la plaque à différentes distances des plaques amyloïdes (par exemple, jusqu'à 0 µm, 10 µm, 20 µm, 30 µm, etc. de la plaque)
Rapport microglies/astrocytes à proximité de la plaque	Sans unité	Rapport entre les microglies et les astrocytes à proximité immédiate du microenvironnement de la plaque (par exemple, jusqu'à 10 µm autour des plaques).
Morphométrie des plaques	Multiple	Différentes mesures morphométriques peuvent être extraites de la détection des plaques, telles que la taille des plaques, leur circularité, etc.

Ce tableau compare les différentes mesures de l'environnement des plaques amyloïdes fournies par la plateforme Biospective.

Pour discuter de vos besoins en matière d'étude ou demander un devis pour les services de marquage et d'analyse quantitative des plaques amyloïdes :

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Questions fréquentes

Pourquoi utilisez-vous des anticorps spécifiques aux fibrilles, tels que l'OC, et en quoi diffèrent-ils des anticorps Aβ classiques ?

OC est notre anticorps principal pour la détection de l'amyloïde fibrillaire et des oligomères fibrillaires, choisi pour sa spécificité envers les agrégats riches en feuillets β. Il détecte à la fois les plaques jeunes et matures, identifiantde manière fiable les plaques compactes ainsi que les structures fibrillaires diffuses, et, surtout,il ne détecte pas l'APP intracellulaire.

Nous fournissons également un anticorps pan-Aβ qui détecte spécifiquement l'amyloïde extracellulaire et , comme l'OC, il présente une réactivité croisée minimale avec l'Aβ intracellulaire ou l'APP pleine longueur, ce qui permet une quantification précise des plaques extracellulaires seules.

En plus de l'OC et du pan-Aβ, nous prenons en charge la quantification multiplexée de l'Aβ1-40, de l'Aβ1-42, de l'Aβ1-43, du MOAB-2ainsi que des clones d'anticorps classiques 6E10 et 4G8 , ce qui permet un profilage biochimique et spatial détaillé de l'hétérogénéité des plaques. Cette approche combinée offre une vision granulaire de la nature des plaques , diffuses ou à noyau dense, deleur taille, deleur maturation, de leur distribution et de leur remodelage à la suite d'une intervention thérapeutique.

Est-il possible de procéder à une co-marquage avec des colorants amyloïdes ou des marqueurs d'agrégation protéique?

Oui. Les colorants amyloïdes tels que la thioflavine S et le pFTAA peuvent être intégrés dans des panels multiplex, à condition que les tissus et les conditions de fixation soient compatibles.La thioflavine S est un marqueur amyloïde classique des feuillets β etle pFTAAest un coloranthautement sensible qui permet de résoudre les conformations fibrillaires. Ces colorants complètent les anticorps OC ou Aβ pour fournir une évaluation multicouche de l'architecture protéique des plaques.

Quels formats de tissus prenez-vous en charge (FFPE, congelés)?

Nous traitons régulièrement des tissus FFPE et des tissus fixés et congelés. Les conditions de récupération des antigènes, notamment HIER, acide formique ou digestion enzymatique, sont optimisées pour chaque anticorps amyloïde (par exemple OC , pan-Aβ, Aβ1-40/42/43) et pour la compatibilité multiplexe. Nos processus préservent la morphologie fine des plaques et les microstructures environnantes sans compromettre la stabilité des fluorophores.

Combien de marqueurs pouvez-vous utiliser simultanément?

Nos panneaux multiplex standard prennent en charge 4 marqueurs plus le DAPI en un seul cycle de coloration, généralement à l'aide des marqueurs AF488, AF555, AF647 et AF750.Nous combinons des anticorps primaires provenant de plusieurs espèces hôtes et validons des anticorps secondaires spécifiques à chaque espèce afin d'éviter toute réactivité croisée. Lorsque cela s'avère utile, nous intégrons des anticorps primaires pré-conjugués afin d'étendre la capacité multiplex tout en conservant des rapports signal/bruit élevés.

Utilisez-vous des agents anti-fluorescence pour réduire l'autofluorescence?

Prend-il en charge la numérisation de lames entières et les cohortes à grande échelle?

Est-il possible d'intégrer les données relatives aux biomarqueurs du LCR ou du sang aux résultats histologiques?

Références

Mots clés

anticorps ciblant différentes espèces d'amyloïde bêta, permettant une stratification biochimique de la composition des plaques. Ces isoformes révèlent des différences dans la propension à l'agrégation, le comportement d'ensemencement des plaques et la distribution spatiale. Combinés à l'OC, ils permettent une caractérisation multidimensionnelle des plaques à tous les stades de la maladie et dans toutes les conditions thérapeutiques.

famille de peptides dérivés du traitement de l'APP, au cœur de la pathologie de la maladie d'Alzheimer. La détection multiplexe des espèces Aβ permet une évaluation quantitative de la charge, de la distribution et de l'hétérogénéité biochimique des plaques. Le marquage Aβ facilite l'évaluation de la progression de la maladie et de l'efficacité thérapeutique dans les modèles précliniques de la MA.

anticorps spécifique à la conformation qui reconnaît les structures amyloïdes fibrillaires avec une spécificité et une sensibilité élevées. L'OC est la référence en matière de détection des plaques compactes riches en feuillets β et permet une quantification précise de la charge fibrillaire, de la maturité des plaques et du remodelage induit par le traitement. Il est particulièrement efficace pour

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Types de tissus et modèles de maladies

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Notre processus de marquage et d'analyse des plaques Aβ

Directives relatives au prélèvement, à la préparation et à l'expédition des échantillons

Pourquoi quantifier les plaques amyloïdes bêta ?

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