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Date de dernière mise à jour: 05 septembre 2024
Auteurs: Robin Guay-Lord et Barry J. Bedell, M.D., Ph.D.

Pourquoi est-il important de caractériser et de quantifier les plaques Aβ?

Il est largement reconnu que la dysrégulation amyloïde joue un rôle central dans la progression de la maladie d'Alzheimer (Selkoe, 2016). Les caractéristiques neuropathologiques caractéristiques communément observées dans la MA comprennent les plaques extracellulaires d'amyloïde-β (Aβ), l'astrogliose et l'activation microgliale (Cohen, 2015). Les plaques amyloïdes présentent un large éventail de morphologies et de distributions neuroanatomiques. L'immunohistochimie (IHC) et l'immunofluorescence (IF) peuvent être utilisées pour obtenir des informations détaillées sur la localisation, la distribution et la morphologie des plaques Aβ dans des régions cérébrales spécifiques, offrant un niveau de détail qui ne peut être atteint avec d'autres méthodes de quantification (par exemple, l'imagerie cérébrale, les biomarqueurs de fluides).

En outre, les données cliniques suggèrent que l'étude de la seule charge amyloïde globale dans le cerveau peut ne pas donner une image complète de l'état de la pathologie. En effet, de nombreuses études post-mortem ont montré des patients avec d'abondants dépôts amyloïdes à la mort sans déficience cognitive significative (Katzman, 1988; Hulette, 1998; Aizenstein, 2008). De plus en plus, les scientifiques ont tenté d'établir un lien entre la présence de sous-types spécifiques de plaques bêta-amyloïdes et l'évolution clinique. Ils ont ainsi constaté que les plaques amyloïdes dépourvues de structures fibrillaires (également appelées « plaques diffuses ») sont souvent présentes chez les patients ne présentant pas de troubles cognitifs, contrairement aux plaques fibrillaires plus compactes qui sont plus susceptibles d'être associées à des troubles cognitifs. Il a également été démontré que la présence de neurites gonflés ou dystrophiques à proximité de la plaque est fortement corrélée aux troubles cognitifs et à la gravité de la maladie (Dickson, 2001; Ly, 2011). Ces résultats soulignent la nécessité d'une caractérisation précise des différents sous-types de plaques amyloïdes, ce qui pourrait nous aider à mieux comprendre l'hétérogénéité de la maladie.

Quels sont les différents sous-types de plaques amyloïdes-β?

Les plaques amyloïdes-bêta proviennent du clivage de la protéine précurseur de l'amyloïde (APP) par les enzymes β- et γ-sécrétase. Ce processus génère des peptides Aβ dont la longueur peut varier, les formes Aβ40 et Aβ42 étant les plus significatives dans la maladie d'Alzheimer. L'accumulation d'Aβ dans le cerveau suit un schéma spatiotemporel spécifique, apparaissant initialement dans le néocortex et se propageant ensuite aux régions sous-corticales, y compris l'hippocampe (Braak, 1991; Braak, 2006). Le peptide Aβ existe initialement à l'état monomérique, mais il peut s'auto-agréger sous diverses formes, telles que des oligomères fibrillaires courts, des oligomères globulaires non fibrillaires et des fibrilles amyloïdes qui forment des agrégats appelés plaques.

Schéma hypothétique de progression de la pathologie β-amyloïde (adapté de Braak, 1991).

Les plaques Aβ sont classées, en fonction de leur morphologie et de leur contenu en fibrilles, en types diffus et à noyau dense à l'aide de colorants qui ciblent la structure en feuillets β-plexes, tels que le rouge Congo ou la thioflavine-S (Serrano-Pozo, 2011). Les plaques diffuses négatives à la thioflavine-S présentent des formes et des tailles variables et n'ont pas de structure fibrillaire bien définie. Ces plaques diffuses sont généralement observées dans le cerveau de personnes âgées cognitivement intactes. Les plaques à noyau dense positives à la thioflavine-S, en revanche, ont un noyau compact composé d'un groupe de filaments extracellulaires entremêlés de processus neuronaux, astrocytaires et microgliaux environnants (Serrano-Pozo, 2011). Ces plaques neuritiques (PN) sont associées à une augmentation de la perte synaptique, de la perte de neurones, de l'astrogliose et de la microgliose (Dickson, 2001; Ly, 2011; Tsering, 2023). Les NP sont généralement observées aux stades avancés de la maladie d'Alzheimer et présentent une corrélation plus forte avec le déclin cognitif que les plaques diffuses (Haroutunian, 1998). Cette constatation souligne la nécessité de faire la distinction entre les plaques diffuses et les plaques névritiques lorsqu'on tente d'établir un lien entre la charge en β-amyloïde et la progression de la maladie.

Les agrégats Aβ peuvent également se déposer dans les parois des vaisseaux, ce que l'on appelle souvent l'Aβ vasculaire ou l'angiopathie amyloïde cérébrale (CAA). Ces dépôts sont généralement formés de peptides Aβ40, qui sont plus solubles que les peptides Aβ42 que l'on trouve généralement dans les plaques parenchymateuses typiques. Des études ont montré que l'ACA peut être un facteur contribuant au déclin cognitif observé dans la MA (Greenberg, 2004; Arvanitakis, 2011).

Illustration des différents types de plaques amyloïdes-β.

Illustration des différents types de plaques amyloïdes-β.

D'autres sous-types plus rares de plaques Aβ comprennent les plaques à noyau dense et à grains grossiers, qui sont associées aux premiers stades de la MA (Boon, 2020), et les plaques cotonneuses diffuses, que l'on trouve souvent chez les patients présentant des mutations génétiques spécifiques, telles que celles du gène PSEN1 (Crook, 1998).

Comment les plaques amyloïdes sont-elles caractérisées dans les images d'immunohistochimie et d'immunofluorescence multiplexe?

L'évaluation de la charge en plaques dans les données d'immunohistochimie (IHC) et d'immunofluorescence (IF) est traditionnellement effectuée manuellement à l'aide de critères semi-quantitatifs établis par le Consortium to Establish a Registry for Alzheimer's Disease (CERAD) (Mirra, 1991). Ces critères se concentrent sur l'évaluation de la plus forte densité de plaques neuritiques néocorticales et ne prennent pas en compte la présence de plaques diffuses dans le calcul du score.

Des efforts considérables ont été déployés pour mettre au point des approches quantitatives permettant d'évaluer la charge des plaques Aβ en tenant compte de la localisation anatomique, de la densité des plaques et du sous-type de plaque. Les méthodes couramment employées pour quantifier manuellement cette caractéristiques comprennent le comptage stéréologique non biaisé des plaques (Busch, 1997; Ohm, 1997) et le classement des densités de plaques à l'aide d'une échelle d'évaluation numérique (Arnold, 1991). Ces évaluations manuelles peuvent être fastidieuses, sujettes à la variabilité entre les évaluateurs et difficiles à adapter à des études de plus grande envergure. Des méthodes automatiques reposant sur des algorithmes classiques de vision par ordinateur (par exemple, seuillage, opérations morphologiques, etc.) ont été étudiées pour réduire la charge de travail des pathologistes et augmenter la fiabilité de la quantification (Byrne, 2009; Neltner, 2012; Samaroo, 2012; Kapasi, 2023). Cependant, une grande majorité de ces méthodes classiques nécessitent encore des entrées définies par l'homme, ce qui les rend sensibles aux variations des lots et à la variabilité des colorations observées dans des ensembles de données plus importants.

Notre groupe a procédé à la quantification des plaques amyloïdes dans un modèle de souris présentant une accumulation précoce et progressive de dépôts β-amyloïdes semblable à celle de la maladie d'Alzheimer. Cette lignée de souris transgéniques (ARTE10) est caractérisée par la surexpression de l'APP et de la PS1 mutées (Willuweit, 2009). La charge de la plaque Aβ a été évaluée à partir d'images IF de ces souris à différents moments en utilisant une combinaison de flou, de seuils d'hystérésis locaux et d'opérations morphologiques. Cette approche était entièrement automatisée et ne nécessitait pas d'entrées définies par l'homme pour quantifier la charge Aβ dans les coupes de tissus. Voir notre présentation - L'amyloïde-β et le microenvironnement inflammatoire dans un modèle de souris APP/PS1 de la maladie d'Alzheimer.

Images de microscopie

La visualisateur d'images interactif ci-dessous vous permet d'explorer l'ensemble de la section de tissu en immunofluorescence multiplexe.

Vous pouvez vous déplacer dans l'image à l'aide du bouton gauche de la souris. Vous pouvez effectuer un zoom avant et arrière à l'aide de la souris/du trackpad (haut/bas) ou des boutons + et - situés dans le coin supérieur gauche. Vous pouvez activer/désactiver, modifier la couleur et ajuster les paramètres de l'image pour les canaux et les segmentations dans le panneau de contrôle situé dans le coin supérieur droit.

Dans cette visualisation, un cerveau de souris APP/PS1 (ARTE10) est représenté avec les masques de segmentation « Plaques Aβ » (jaune), qui peuvent être cochés/décochés pour cacher/afficher la coloration « Amyloïde-β » sous-jacente (rouge).

Panneau de contrôle
Section: APP/PS1 Mouse
Segmentations
Canaux

Coupe de tissu cérébral colorée par immunofluorescence multiplex montrant des plaques Aβ (avec segmentation), des microglies activées et des astrocytes réactifs chez une souris transgénique APP/PS1 (ARTE10) âgée de 12 mois. Notez que la sensibilité de l'Aβ peut être modifiée pendant le traitement de l'image via divers réglages de paramètres et opérations morphologiques.

Plus récemment, des groupes de recherche ont signalé avoir utilisé des approches d'apprentissage profond pour la classification automatisée des plaques de la MA en sous-types de plaques, en tirant parti de la performance de niveau expert de ces modèles pour reconnaître des modèles complexes dans les images. Par exemple, Tang et ses collègues (Tang, 2019) ont développé un pipeline d'apprentissage profond de preuve de concept qui analyse les images de diapositives entières et classifie les pathologies Aβ entre les plaques diffuses, les plaques à noyau dense et la CAA. Le même groupe a ensuite développé ces résultats en montrant que ces modèles d'apprentissage automatique étaient robustes aux variations de cohorte dans les études multicentriques (Vizcarra, 2020; Wong, 2022). D'autres groupes ont signalé avoir utilisé des approches similaires pour différencier les tauopathies (Signaevsky, 2019; Koga, 2022; Wong, 2022). Dans l'ensemble, des efforts considérables ont été déployés pour former ces modèles d'apprentissage profond sur un large éventail de paramètres d'entrée (région du cerveau, méthodologie de coloration, caractéristiques pathologiques) afin de les rendre adaptables et généralisables.

Notre équipe se fera un plaisir de répondre à vos questions sur l'analyse des plaques amyloïdes-β ou de vous fournir des informations spécifiques sur les modèles de la maladie d'Alzheimer que nous utilisons pour les études d'efficacité thérapeutique.

En savoir plus sur nos modèles pour la maladie d'Alzheimer

FAQs

Quels sont les marqueurs couramment utilisés pour identifier les plaques amyloïdes?

En général, les plaques sont identifiées et classées par histologie standard à l'aide de colorants, tels que le rouge Congo, la thioflavine-S ou la coloration à l'argent de Gallyas. Les méthodes d'immunohistochimie (IHC) et d'immunofluorescence (IF) peuvent utiliser des anticorps anti-Aβ ou des anticorps anti-fibrilles amyloïdes (OC) pour colorer l'amyloïde totale et utiliser la thioflavine-S pour distinguer les plaques diffuses des plaques centrales. En outre, d'autres canaux fluorescents peuvent être utilisés pour mettre en évidence les différentes cellules gliales (astrocytes, microglies) présentes dans le microenvironnement des plaques amyloïdes.


Quelles sont les autres méthodes permettant de quantifier la charge amyloïde dans le contexte de la maladie d'Alzheimer?

La charge amyloïde globale peut être mesurée in vivo à l'aide de techniques d'imagerie non invasives, telles que la tomographie par émission de positons (TEP). Elle peut également être mesurée à l'aide de divers marqueurs de biofluides (par exemple, le sang, le LCR) en utilisant un large éventail de techniques « omiques ». Bien que ces méthodes fournissent des données longitudinales précieuses, elles manquent de résolution spatiale et n'offrent pas d'informations sur l'environnement cellulaire des plaques amyloïdes.


Comment l'amyloïde est-elle quantifiée dans les modèles murins de la maladie d'Alzheimer couramment utilisés?

Des travaux approfondis ont été réalisés au fil des ans pour quantifier l'accumulation spatio-temporelle d'Aβ dans une grande variété de modèles murins de la MA, y compris, mais sans s'y limiter, les souris APP/PS1 (Ferguson, 2013; Lok, 2013; Sasaguri, 2017; Willuweit, 2009), les souris 5xFAD (Forner, 2021; Liu, 2017; Oh, 2018), et les souris Tg2576 (Han, 2012; Liu, 2017). Une grande variété de méthodes de quantification a été utilisée à cette fin, allant de l'identification stéréologique manuelle à des algorithmes de quantification entièrement automatisés.


Quels sont les principaux défis rencontrés lors de la quantification des plaques amyloïdes dans les modèles de rongeurs transgéniques de la maladie d'Alzheimer?

La quantification des plaques amyloïdes dans les modèles de rongeurs présente des difficultés liées à la variabilité de la distribution des plaques, à l'intensité de la coloration et au bruit de fond dans les images IHC et IF. Les images IHC sont également sujettes à des plis, des déchirures et des artefacts qui peuvent interférer avec la quantification précise de la charge amyloïde. L'élaboration de protocoles normalisés pour optimiser le traitement des tissus, les dilutions d'anticorps, les protocoles de coloration et les paramètres d'acquisition des images peut contribuer à minimiser la variabilité et à garantir la reproductibilité entre les études. Les efforts de collaboration, tels que les comparaisons inter-laboratoires et les tests de compétence, peuvent également contribuer à établir des protocoles et des lignes directrices consensuels pour la quantification précise des plaques et l'interprétation des données.


Références

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Mots clés

Maladie d'Alzheimer: maladie neurodégénérative progressive caractérisée par un déclin cognitif, une perte de mémoire et des changements de comportement. Elle est associée à l'accumulation de plaques de bêta-amyloïde et d'enchevêtrements de tau dans le cerveau, ainsi qu'à la perte de neurones et de synapses dans le cortex cérébral et les régions sous-corticales.  

Amyloïde-bêta (Aβ): Peptide dérivé de la protéine précurseur de l'amyloïde (APP) qui peut s'agréger pour former des plaques.

Astrogliose: Prolifération et hypertrophie des astrocytes, un type de cellule gliale, en réponse à une lésion cérébrale ou à une maladie, souvent observée dans les maladies neurodégénératives.

Angiopathie amyloïde cérébrale (CAA): Une condition dans laquelle des plaques de bêta-amyloïde s'accumulent dans les parois des vaisseaux sanguins cérébraux, contribuant potentiellement au déclin cognitif et augmentant le risque d'accident vasculaire cérébral hémorragique.

Déficit cognitif: Déclin des fonctions cognitives, notamment de la mémoire, de la pensée et des capacités de raisonnement.

Apprentissage profond: Un sous-ensemble de techniques d'apprentissage automatique qui utilisent des réseaux neuronaux à plusieurs couches (réseaux neuronaux profonds) pour analyser des modèles complexes dans les données.

Plaques diffuses: Un sous-type de plaques de bêta-amyloïde dépourvues de structure fibrillaire compacte et souvent associées à des cas sans troubles cognitifs.

Immunofluorescence (IF): Méthode similaire à l'immunohistochimie qui utilise des anticorps marqués par fluorescence pour détecter des antigènes spécifiques dans des échantillons de tissus.

Immunohistochimie (IHC): technique de laboratoire permettant d'identifier rapidement des protéines spécifiques dans les cellules et les tissus. L'IHC exploite la capacité des anticorps à cibler des protéines spécifiques, puis utilise un sandwich d'anticorps secondaires et de réactifs de détection pour identifier et localiser la protéine d'intérêt dans des coupes de tissus au niveau microscopique. 

Plaques neuritiques: Plaque amyloïde contenant des neurites dystrophiques (axones et dendrites en dégénérescence).

Neurodégénérescence: Processus complexe et multifactoriel entraînant la perte de neurones.

Techniques omiques: Une gamme de méthodologies utilisées pour étudier les molécules biologiques à grande échelle, telles que la génomique, la protéomique et la métabolomique.


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